COVID-19. Odporność po infekcji a odporność poszczepienna

Autor: dr Paula Dobosz

  Odporność po infekcji a odporność poszczepienna: limfocyty T


Drugi rodzaj odpowiedzi, odpowiedź warunkowana przez limfocyty T, nazywana z tego powodu komórkową, polega w dużym uproszczeniu na bezpośrednim atakowaniu patogenów przez limfocyty T. Nie jest tajemnicą, iż mechanizmy genetyczne regulujące odpowiedź komórkową, jak również sam proces powstawania tak szerokiego repertuaru limfocytów T, pozostają wciąż w dużej mierze przedmiotem analiz naukowych. Dopiero w 2019 roku po raz pierwszy udało się precyzyjnie zmapować najważniejsze geny regulujące pracę leukocytów ludzkich, w tym szczególnie interesujących limfocytów Th2. To idealnie obrazuje poziom trudności badań genetycznych związanych z analizą tych regionów genomu, w których znajdują się geny kodujące elementy układu immunologicznego. Na podstawie odkryć z 2019 roku do dziś opisano już dość precyzyjnie sposób aktywacji limfocytów Th2, jak również genetyczne podłoże mechanizmów ich różnicowania i skutecznej eliminacji obcych antygenów.

Limfocyty T

Wytwarzane są z komórek macierzystych szpiku kostnego. Następnie, w drodze do swojej docelowej tkanki limfatycznej, dojrzewają w grasicy. Tam, w procesie różnicowania, który wciąż jest przedmiotem badań, stają się immunologicznie kompetentne, a zatem zdolne do wywoływania odpowiedzi immunologicznej. Limfocyty T rozpoznają i reagują na specyficzne antygeny znajdujące się na powierzchni wielu komórek, w tym własnych komórek zaatakowanych przez patogeny. Cały proces rozpoznawania, aktywacji i atakowania jest ściśle regulowany na poziomie genetycznym i na tyle skomplikowany, że niezmiennie pozostaje jedną z największych białych plam na ogromnej mapie naszej wiedzy, tak genetycznej, jak i immunologicznej.

Wyróżnia się trzy główne klasy limfocytów T:

  • pomocnicze (oznaczane jako Th, od angielskiego helpers), ich praca polega najczęściej na uwalnianiu substancji aktywujących odpowiedź immunologiczną lub ją wzmacniających;
  • cytotoksyczne (oznaczane jako Tc, cytotoksyczne), które rozpoznają i niszczą obce komórki, ale również czasem komórki nowotworowe;
  • regulatorowe, znane też jako supresorowe (T reg, od słowa „regulatory”), które hamują odpowiedź immunologiczną, ponieważ uwalniają cytokiny blokujące aktywność pozostałych limfocytów, nie tylko T, ale również B.

Szczegółowy opis genetycznego podłoża ich funkcjonowania zdecydowanie wykracza poza ramy tego artykułu, jednakże nie sposób nie wspomnieć tu o genach HLA, które uważa się za najtrudniejsze do analizy genetycznej.

Geny HLA

Geny HLA, kodujące antygeny ludzkiego układu zgodności tkankowej (ang. human leukocyte antigens), dzielą się na trzy główne podregiony: geny należące do klasy I, II oraz III. Antygeny klas I i II mają w dużej mierze wspólne zadanie: prezentowanie niewielkich peptydów na powierzchni komórek tak, aby mogły być rozpoznane przez limfocyty T. Klasa I jest zaangażowana w prezentowanie antygenów limfocytom z markerem CD8, a klasa II ‒ limfocytom CD4. Geny, które kodują cząsteczki HLA klasy I, położone są na chromosomie 6 dystalnie (najbliżej telomeru).

Pod względem ich lokalizacji w genomie geny HLA są trudne do analizy. Geny klasy II zlokalizowane są proksymalnie, najbliżej centromeru. Region genomu kodujący cząsteczki klasy III znajduje się pomiędzy regionami zawierającymi geny kodujące antygeny klas I i II. Region klasy I zawiera klasyczne i dobrze opisane geny HLA-A, HLA-B i HLA-C. Kodują one łańcuchy ciężkie cząsteczek klasy I. Również w tym regionie znajdują się jeszcze inne geny, zwane HLA-E, HLA-L, HLA-J, HLA-K, HLA-H i HLA-G, które kodują tzw. nieklasyczne cząsteczki HLA. Wyodrębnia się 5 głównych typów białka HLA klasy II oznaczonych jako HLA-DP, HLA-DQ, HLA-DR (klasyczne) oraz HLA-DM, HLA-DO (nieklasyczne). I wreszcie w regionie klasy III zidentyfikowano już ponad 50 genów, a wśród nich m.in. składowe dopełniacza C4, C2, a także białka uczestniczące w powstawaniu stanów zapalnych lub aktywacji komórek NK, a nawet białka szoku cieplnego – HSP (ang. heat shock proteins) oraz białka należące do superodziny TNF (ang. tumor necrosis factor).

COVID-19 a limfocyty pamięci T

Wydaje się, że w przypadku infekcji COVID-19 komórki pamięci T nie tylko identyfikują i niszczą komórki zakażone wirusem, ale po przebytej chorobie pozostają w organizmie i mogą szybko reagować zawsze wtedy, gdy ten sam patogen znów się pojawi. Na podstawie danych zebranych w wyniku obserwacji przebiegu infekcji wywoływanych innymi koronawirusami, np. SARS-CoV-1, sugeruje się, że żywotność limfocytów T pamięci w tym przypadku może liczyć się w dziesięcioleciach. Jedne z pierwszych badań, jakie dotychczas ukazały się w tym obszarze, analizowało próbki krwi od 23 osób, które przeszły zakażenie SARS-CoV-1 w sposób ciężki: odnaleziono w nich limfocyty pamięci T specyficzne dla wirusa SARS-CoV-1 sprzed 17 lat.

Z drugiej jednak strony wiadomo już, że możliwe jest ponowne zachorowanie na COVID-19 w krótkim czasie, co może jasno sugerować, iż przynajmniej u części pacjentów nie dochodzi do wytworzenia pamięci immunologicznej. Dla przykładu w Korei Południowej już w bardzo początkowym okresie pandemii zanotowano 263 przypadki ponownego zakażenia koronawirusem u chorych, którzy zaledwie kilka tygodni wcześniej przeszli COVID-19 i mieli ujemny wynik testu na obecność koronawirusa SARS-CoV-2. Tamtejsi specjaliści z koreańskiego Centrum Kontroli i Zapobiegania Chorobom wskazywali na bardzo ciekawy mechanizm tego zjawiska: otóż ustalono, że przyczyną dodatnich wyników u tych osób nie było ani ponowne zakażenie, ani też reaktywacja wirusa, lecz pozostałości przebytej infekcji w postaci fragmentów RNA w drogach oddechowych badanych osób. Uważa się obecnie, że takie resztkowe RNA może się utrzymywać w organizmie nawet do kilku miesięcy po przechorowaniu COVID-19.

Odporność krzyżowa

Kolejnym mechanizmem wartym uwagi jest odporność krzyżowa, czyli zjawisko, w którym po wcześniejszym narażeniu układu odpornościowego na dany rodzaj patogenu dochodzi do zmiany reakcji organizmu na inny patogen, niejako przy okazji.

Odporność krzyżowa dość często zdarza się np. w obrębie blisko spokrewnionych ze sobą patogenów, ale może też wystąpić pomiędzy patogenami zupełnie niespokrewnionymi, a nawet należącymi do dwóch odmiennych typów, tak dalece się od siebie różniących, jak np. wirusy i bakterie.



Wydaje się, że organizm ludzki może zareagować odpornością krzyżową również na koronawirusa SARS-CoV-2 i pewne badania wskazują na występowanie tego typu zjawiska.

W jednym z nich wykazano, że komórki pamięci T powstałe w wyniku przechorowania COVID-19 obecne były u 83% pacjentów. Jednakże te same komórki wykryto również we krwi 35% zdrowych uczestników badania. Być może układ odpornościowy badanych osób nauczył się zwalczania podobnej infekcji, takiej jak SARS-CoV-1, i mógł tę „pamięć” wykorzystać także w przypadku późniejszego zakażenia koronawirusem SARS-CoV-2. Nie jest także wykluczone, że te osoby przeszły COVID-19 w sposób bezobjawowy. W wielu innych badaniach wykazano obecność limfocytów T pamięci, swoistych dla COVID-19 także u tych osób, które nie przeszły infekcji SARS-CoV-2. W opinii specjalistów takie limfocyty T najprawdopodobniej pochodziły z wcześniejszej ekspozycji na inne koronawirusy, np. znane od lat i mniej groźne, które powodują zwykłe przeziębienie. Hipotezę tę zdają się potwierdzać również kolejne badania, prezentujące przypadki osób, które nigdy nie chorowały na COVID-19, a mimo to stwierdzono u nich limfocyty pamięci T, rozpoznające zarówno nowego koronawirusa SARS-CoV-2, ale także cztery inne rodzaje znanych wcześniej nauce koronawirusów.

Znane są również przykłady wariantów genetycznych związanych z silniejszą lub słabszą produkcją limfocytów pamięci T, jak również warianty związane z ich zdolnością do produkcji przeciwciał. I tak na przykład osoby posiadające mniejszą liczbę kopii pewnego fragmentu genu IGHV1-69 (CNV) mają nieco „mniej intensywnie zachodzącą” rekombinację VDJ, podczas której wytwarzane jest także mniej nowych mutacji. W efekcie może to wpływać na zmniejszony repertuar powstających przeciwciał. W przypadku infekcji wirusem SARS-CoV-2 takie warianty nie są jeszcze znane, choć badania trwają, tak dla wielu innych, znanych od lat patogenów, istnieją już dowody naukowe: dla przykładu pewien wariant genu IGKV2-29 związany jest z podatnością na infekcję Haemophilus influenzae: wykazano, że znacząco obniża on częstość procesu rearanżacji genów związanych bezpośrednio z produkcją przeciwciał.

  Komórki pamięci




Warto mieć na uwadze, iż nie wszystkie choroby zakaźne prowadzą do wytworzenia komórek pamięci, i odwrotnie – pewne choroby pozostawiają po sobie ślad na całe życie.

Przykładem takiej choroby, po której zazwyczaj nie są wytwarzane komórki pamięci, jest zakażenie RSV (ang. respiratory syncytial virus) u dzieci. Jest ono niezwykle powszechne, uważa się, że aż u 95% dzieci w wieku do 2. roku życia stwierdza się przeciwciała, które świadczą o kontakcie z tym wirusem. Jednakże przebycie zakażenia nie chroni dziecka przed ponowną infekcją.

Z drugiej strony przykładem takiej choroby, którą układ odpornościowy bardzo dobrze „zapamiętuje”, jest odra. Jej przechorowanie lub przyjęcie szczepienia ochronnego najczęściej prowadzi do wytworzenia odporności na całe życie. Wirus odry jest nie tylko bardzo groźnym patogenem, ale wydaje się być unikalny także z uwagi na swoją zdolność do wywoływania zjawiska znanego w literaturze przedmiotu jako amnezja immunologiczna. W dużym uproszczeniu polega ono na niszczeniu istniejących wcześniej komórek pamięci B, jak również generalnie obniżaniu ich liczby w organizmie. Dodatkowo u osób, które przeszły odrę, obserwuje się spadek nawet o 70% repertuaru wszystkich istniejących przed infekcją przeciwciał. Wiadomo już tym samym, że większość przypadków zgonów związanych z odrą może nie być bezpośrednio powodowana samym wirusem odry, lecz wywołaną wirusem immunosupresją i następującymi w efekcie kolejnymi infekcjami. Ponadto nabyta wcześniej odporność na inne choroby, w tym za sprawą szczepień ochronnych, może być dosłownie i całkowicie „wymazywana” po przechorowaniu odry.

Zjawisko to jest szczególnie niebezpieczne przy obecnej tendencji do unikania szczepień ochronnych i zwiększającej się globalnie liczby zachorowań na odrę. W samym tylko 2019 roku zanotowano globalnie ponad 500 tys. przypadków, w tym w samej Europie zaobserwowano wzrost zachorowań o ponad 30% w stosunku do wcześniejszych lat. Za ten stan rzeczy obwiniane są przede wszystkim ruchy antyszczepionkowe i szerząca się głównie za pośrednictwem internetu infodemia, skłaniająca wielu młodych rodziców do podważania medycznych i naukowych autorytetów, a w ślad za tym do odrzucania zdobyczy nowoczesnej medycyny, w tym szczepień ochronnych.

dr Paula Dobosz

Kierownik Zakładu Genetyki i Genomiki Centralnego Szpitala Klinicznego MSWiA w Warszawie. Genetyk, specjalistka genetyki i genomiki nowotworów oraz medycyny genomowej. Jest jedną z kilkunastu osób, które jako pierwsze uzyskały dyplom Genomic Medicine. Absolwentka m.in. Uniwersytetu Jagiellońskiego, Warszawskiego Uniwersytetu Medycznego oraz Cambridge University.
Bibiliografia

  1. Sompayrac L: How the Immune System Works. Wiley Blackwell 2016.

  2. Abbas AK, Lichtman AH, Pillai S: Immunologia – funkcje i zaburzenia układu immunologicznego. Elsevier 2020.

  3. Wojciechowska-Koszko I, Dołęgowska B (red.): Immunologia – teoretyczny i praktyczny przewodnik. PUM, Szczecin 2020.

  4. Gołąb J, Jakóbisiak M, Lasek W, Stokłosa T (red.): Immunologia. PZWL, Warszawa 2017.

  5. Żeromski J, Madaliński K, Witkowski JM (red.): Diagnostyka immunologiczna w praktyce lekarskiej. Mediton, Łódź 2017.

  6. Dacon C, Peng L, Lin TH et al.: Rare, convergent antibodies targeting the stem helix broadly neutralize diverse betacoronaviruses. Cell Host & Microbe 2022: S1931-3128(22)00523-6.

  7. Weiss SR, Leibowitz JL: Coronavirus pathogenesis. Adv Virus Res 2011; 81: 85-164.

  8. Drosten C, Günther S, Preiser W: Identification of a novel coronavirus in patients with severe acute respiratory syndrome. N Engl J Med 2003; 348: 1967-1976.

  9. Cui J, Li F, Shi Z: Origin and evolution of pathogenic coronaviruses. Nat Rev Microbiol 2019; 7: 181-192.

  10. Zhu N, Zhang D, Wang W ET AL.: A novel coronavirus from patients with pneumonia in China, 2019. N Engl J Med 2020; 82: 727-733.

  11. https://www.who.int/news-room/detail/30-01-2020-statement-on-the-second-meeting-of-the-international-health-regulations-(2005)-emergency-committee-regarding-the-outbreak-of-novel-coronavirus-(2019-ncov) (dostęp: 01.04.2020).

  12. https://www.who.int/dg/speeches/detail/who-director-general-s-opening-remarks-at-the-media-briefing-on-covid-19---11-march-2020 (dostęp: 01.04.2020).

  13. Cheng ZJ, Shan J: 2019 Novel coronavirus: where we are and what we know. Infection 2020; 48: 155-163.

  14. https://szczepienia.pzh.gov.pl/wszystko-o-szczepieniach/opracowywane-szczepionki/.

  15. Mishra KP, Singh AK, Singh SB: Hyperinflammation and Immune Response Generation in COVID-19. Neuroimmunomodulation 2020: 1-7.

  16. Celardo I, Pace L, Cifaldi L et al.: The immune system view of the coronavirus SARS-CoV-2. Biol Direct 2020; 15(1): 30.

  17. Yu X, Yang R: Changes of peripheral lymphocyte subset in patients with SARS-CoV-2 infection during the whole course of disease. Expert Rev Respir Med 2020: 1-7.

  18. Demaret J, Lefevre G, Vuotto F et al.: Severe SARS-CoV-2 patients develop a higher specific T-cell response. Clin Transl Immunology 2020; 9(12): e1217.

  19. Sohrabi Y, Dos Santos JC, Dorenkamp M et al.: Trained immunity as a novel approach against COVID-19 with a focus on Bacillus Calmette-Guerin vaccine: mechanisms, challenges and perspectives. Clin Transl Immunology 2020; 9(12): e1228.

  20. Reynolds CJ, Swadling L, Gibbons JM et al.: Discordant neutralizing antibody and T cell responses in asymptomatic and mild SARS-CoV-2 infection. Sci Immunol 2020; 5(54).

  21. Choe PG, Kim KH, Kang CK et al.: Antibody Responses 8 Months after Asymptomatic or Mild SARS-CoV-2 Infection. Emerg Infect Dis 2020; 27(3).

  22. Amoroso A, Magistroni P, Vespasiano F et al.: HLA and AB0 Polymorphisms May Influence SARS-CoV-2 Infection and COVID-19 Severity. Transplantation 2021; 105(1): 193-200.

  23. Zilla ML, Keetch C, Mitchell G et al.: SARS-CoV-2 serologic immune response in exogenously immunosuppressed patients. J Appl Lab Med 2020.

  24. Simmonds P, Williams S, Harvala H: Understanding the outcomes of COVID-19 ‒ does the current model of an acute respiratory infection really fit? J Gen Virol 2020.

  25. Watson CT, Glanville J, Marasco WA: The Individual and Population Genetics of Antibody Immunity. Trends Immunol 2017; 38(7): 459-470.

  26. Feeney AJ: A defective Vkappa A2 allele in Navajos which may play a role in increased susceptibility to Haemophilus influenzae type b disease. J Clin Invest 1996; 97: 2277-2282.

  27. https://www.sciencedaily.com/releases/2019/01/190110112956.htm.

  28. Wang C: B-cell repertoire responses to varicella-zoster vaccination in human identical twins. Proc Natl Acad Sci U. S. A. 2015; 112: 500-505.

  29. Thomson CA: Germline V-genes sculpt the binding site of a family of antibodies neutralizing human cytomegalovirus. EMBO J 2008; 27: 2592-2602.

  30. Yeung YA: Germline-encoded neutralization of a Staphylococcus aureus virulence factor by the human antibody repertoire. Nat Commun 2016; 7: 13376.

  31. Pappas L: Rapid development of broadly influenza neutralizing antibodies through redundant mutations. Nature 2014; 516: 418-422.

  32. Ying T: Junctional and allele-specific residues are critical for MERS-CoV neutralization by an exceptionally potent germline-like antibody. Nat Commun 2015; 6: 8223.

  33. Hughes EC, Amat JAR, Haney J et al.: SARS-CoV-2 serosurveillance in a patient population reveals differences in virus exposure and antibody-mediated immunity according to host demography and healthcare setting. J Infect Dis 2020.

  34. Devarakonda CKV, Meredith E, Ghosh M, Shapiro LH: Coronavirus Receptors as Immune Modulators. J Immunol 2020.

  35. Wiktorowicz K, Kaszkowiak K: Budowa i funkcja ludzkich antygenów zgodności tkankowej. Część 1. Kodowanie i budowa. Forum Reumatologiczne 2018; 4(1): 37-44.

  36. Choo SY: The HLA system: genetics, immunology, clinical testing, and clinical implications. Yonsei Med J 2007; 48(1): 11-23.

  37. Wieczorek M, Abualrous ET, Sticht J et al.: Major Histocompatibility Complex (MHC) Class I and MHC Class II Proteins: Conformational Plasticity in Antigen Presentation. Front Immunol 2017; 8: 292.

  38. Tumer G, Simpson B, Roberts TK: Genetics, Human Major Histocompatibility Complex (MHC). 2022 Aug 8.

  39. Nowak J: The role of HLA disparity in hematopoietic stem cells transplantation; Hematologia 2010; 1(1): 49-58.

  40. Mosaferi E, Majidi J, Baradaran B: HLA-G expression pattern: reliable assessment for pregnancy outcome prediction. Adv Pharm Bull 2013; 3(2): 443-446.

  41. Shobeiri SS, Abediankenari S, Lashtoo-Aghaee B et al.: Evaluation of soluble human leukocyte antigen-G in peripheral blood of pregnant women with gestational diabetes mellitus. Caspian J Intern Med 2016; 7(3): 178-182.

  42. Sipak-Szmigiel O, Cybulski C, Ronin-Walknowska E, Lubuski J: Ryzyko wczesnej ciąży w zależności od alleli HLA-G. Roczniki Pomorskiej AM w Szczecinie 2008; 54: 60-64.

  43. Babiker A, Marvil C, Waggoner JJ et al.: The Importance and Challenges of Identifying SARS-CoV-2 Reinfections. J Clin Microbiol 2020.

  44. Post N, Eddy D, Huntley C et al.: Antibody response to SARS-CoV-2 infection in humans: A systematic review. PLoS One 2020; 15(12): e0244126.

  45. Chung JY, Thone MN, Kwon YJ: COVID-19 vaccines: The status and perspectives in delivery points of view. Adv Drug Deliv Rev 2020; 170: 1-25.

  46. Yang H, Lyu Y, Hou F: SARS-CoV-2 infection and the antiviral innate immune response. J Mol Cell Biol 2020.

  47. Karmakar D, Lahiri B, Ranjan P et al.: Road Map to Understanding SARS-CoV-2 Clinico-Immunopathology and COVID-19 Disease Severity. Pathogens 2020; 10(1).

  48. Morris KV: The Road Less Traveled: SARS-CoV-2 and Cell-Mediated Immunity. Mol Ther 2020; 28(12): 2521-2522.

  49. Wang X, Gui J: Cell-mediated immunity to SARS-CoV-2. Pediatr Investig 2020; 4(4): 281-291.

  50. Wei J, Zhao J, Han M et al.: SARS-CoV-2 infection in immunocompromised patients: humoral versus cell-mediated immunity. J Immunother Cancer 2020; 8(2).

  51. Hanrath AT, Payne BAI, Duncan CJA: Prior SARS-CoV-2 infection is associated with protection against symptomatic reinfection. J Infect 2020.

  52. Pisanic N, Randad PR, Kruczynski K et al.: COVID-19 Serology at Population Scale: SARS-CoV-2-Specific Antibody Responses in Saliva. J Clin Microbiol 2020; 59(1).

  53. Castro Dopico X, Ols S, Loré K, Karlsson Hedestam GB: Immunity to SARS-CoV-2 induced by infection or vaccination. J Intern Med 2021.

  54. Werbel WA, Boyarsky BJ, Ou MT et al.: Safety and Immunogenicity of a Third Dose of SARS-CoV-2 Vaccine in Solid Organ Transplant Recipients: A Case Series. Ann Intern Med 2021.

  55. Callaway E: COVID vaccine boosters: the most important questions. Nature 2021.

  56. Bergwerk M, Gonen T, Lustig Y et al.: Covid-19 Breakthrough Infections in Vaccinated Health Care Workers. N Engl J Med 2021.

  57. Deng W, Bao L, Liu J et al.: Primary exposure to SARS-CoV-2 protects against reinfection in rhesus macaques. Science 2020; 369: 818-823.

  58. Hamady A, Lee J, Loboda ZA: Waning antibody responses in COVID-19: what can we learn from the analysis of other coronaviruses. Infection 2021.

  59. Rank A, Tzortzini A, Kling E et al.: One Year after Mild COVID-19: The Majority of Patients Maintain Specific Immunity, But One in Four Still Suffer from Long-Term Symptoms. J Clin Med 2021; 10(15): 3305.

  60. Le Bert N, Tan AT, Kunasegaran K et al.: SARS-CoV-2-specific T cell immunity in cases of COVID-19 and SARS, and uninfected controls. Nature 2020; 584: 457-462.

  61. da Silva Antunes R, Pallikkuth S, Williams E et al.: Differential T-Cell Reactivity to Endemic Coronaviruses and SARS-CoV-2 in Community and Health Care Workers. J Infect Dis 2021; 224: 70-80.

  62. Hanan N, Doud RL, Park IW et al.: The Many Faces of Innate Immunity in SARS-CoV-2 Infection. Vaccines (Basel) 2021; 9: 596.

  63. Lee E, Oh JE: Humoral Immunity against SARS-CoV-2 and the Impact on COVID-19 Pathogenesis. Mol Cells 2021; 44: 392-400.

  64. DiPiazza AT, Graham BS, Ruckwardt TJ: T cell immunity to SARS-CoV-2 following natural infection and vaccination. Biochem Biophys Res Commun 2021; 538: 211-217.

  65. Wu F, Liu M, Wang A et al.: Evaluating the Association of Clinical Characteristics With Neutralizing Antibody Levels in Patients Who Have Recovered From Mild COVID-19 in Shanghai, China. JAMA Intern Med 2020; 180: 1356-1362.

  66. Yu X, Tsibane T, McGraw PA et al.: Neutralizing antibodies derived from the B cells of 1918 influenza pandemic survivors. Nature 2008; 455: 532-536.

  67. Rodda LB, Netland J, Shehata L et al.: Functional SARS-CoV-2-Specific Immune Memory Persists after Mild COVID-19. Cell 2021; 184: 169-183.e17.

  68. Sekine T, Perez-Potti A, Rivera-Ballesteros O et al.: Robust T Cell Immunity in Convalescent Individuals with Asymptomatic or Mild COVID-19. Cell 2020; 183: 158-168.e14.

  69. Braun J, Loyal L, Frentsch M et al.: SARS-CoV-2-reactive T cells in healthy donors and patients with COVID-19. Nature 2020; 587: 270-274.

  70. Schmidt ME, Varga SM: The CD8 T Cell Response to Respiratory Virus Infections. Front Immunol 2018; 9: 678.

  71. Flaxman A, Marchevsky N, Jenkin D et al.: Tolerability and Immunogenicity After a Late Second Dose or a Third Dose of ChAdOx1 nCoV-19 (AZD1222). Preprints with The Lancet 2021. https://papers.ssrn.com/sol3/papers.cfm?abstract_id=3873839.

  72. Morales GB, Munoz MA: Immune amnesia induced by measles and its effects on concurrent epidemics. J R Soc Interface 18, 20210153.

  73. Zhang JY, Roberts H, Flores DSC et al.: Using de novo assembly to identify structural variation of eight complex immune system gene regions. PLOS Computational Biology 2021; 17(8): e1009254.

  74. Goldfeder RL, Priest JR, Zook JM et al.: Medical implications of technical accuracy in genome sequencing. Genome Med 2016; 8: 24.

  75. Reis ALM, Deveson IW, Madala BS et al.: Using synthetic chromosome controls to evaluate the sequencing of difficult regions within the human genome. Genome Biol 2022; 23: 19.

  76. Hurley CK, Kempenich J, Wadsworth K et al.: Common, intermediate and well-documented HLA alleles in world populations: CIWD version 3.0.0. HLA 2020; 95(6): 516-531.

  77. Klasberg S, Surendranath V, Lange V, Schöfl G: Bioinformatics Strategies, Challenges, and Opportunities for Next Generation Sequencing-Based HLA Genotyping. Transfus Med Hemother 2019; 46: 312-325.

  78. Mosbruger TL, Dinou A, Duke JL et al.: Utilizing nanopore sequencing technology for the rapid and comprehensive characterization of eleven HLA loci; addressing the need for deceased donor expedited HLA typing. Hum Immunol 2020; 81(8): 413-422.

  79. Hu T, Chitnis N, Monos D, Dinh A: Next-generation sequencing technologies: An overview. Hum Immunol 2021; 82(11): 801-811.

  80. Pröll J, Danzer M, Stabentheiner S et al.: Sequence capture and next generation resequencing of the MHC region highlights potential transplantation determinants in HLA identical haematopoietic stem cell transplantation. DNA Res 2011; 18(4): 201-210.

  81. Lind C, Ferriola D, Mackiewicz K et al.: Next-generation sequencing: the solution for high-resolution, unambiguous human leukocyte antigen typing. Hum Immunol 2010; 71(10): 1033-1042.

  82. McCombie WR, McPherson JD, Mardis ER: Next-Generation Sequencing Technologies. Cold Spring Harb Perspect Med 2019; 9(11): a036798.