COVID-19. Odporność po infekcji a odporność poszczepienna

Autor: dr Paula Dobosz

  Czego dowiesz się z artykułu:


  • Co już wiemy o koronwirusach i COVID-19.
  • Czy jest szansa na uzyskanie dłużej odporności poszczepiennej.
  • Dlaczego największe znaczenie mają mechanizmy odpowiedzi swoistej nabytej.
  • Jak dobrze zrozumieć rolę limfocytów T w budowaniu odporność.
  • Czy organizm ludzki może zareagować odpornością krzyżową również na koronawirusa SARS-CoV-2.
  • Jakie choroby zakaźne prowadzą do wytworzenia komórek pamięci, i odwrotnie – które z nich pozostawiają po sobie ślad na całe życie.

  Co już wiemy o koronwisrusach i COVID-19


Koronawirusy stanowią dość liczną rodzinę osłonkowych RNA-wirusów, mogących zakażać zwierzęta, w tym również i ludzi, powodując choroby układu oddechowego, a czasem także układu pokarmowego. Do dziś opisano sześć ludzkich koronawirusów (ang. human coronaviruses ‒ HCoVs): dwa alfa-koronawirusy ‒ HCoV-229E i HCoVs-NL63 oraz cztery beta-koronawirusy ‒ HCoVs-OC43, HCoVs-HKU1, SARS-CoV i MERS-CoV. Nauka przekonuje, że nowe „gatunki” koronawirusów mogą dość regularnie i okresowo pojawiać się u ludzi, tak z uwagi na wysoką częstość występowania koronawirusów na świecie, jak również ich dużą różnorodność genetyczną i wysoką zdolność do rekombinacji, ale także wysoce prawdopodobne interakcje człowiek-zwierzę. Spośród znanych koronawirusów aż cztery powodują przeziębienia u ludzi, zwykle niegroźne, przy czym wytwarzająca się odporność na nie jest krótkotrwała.

Historia COVID-19 rozpoczęła się pod koniec grudnia 2019 roku w chińskim mieście Wuhan. To właśnie wtedy zaobserwowano pierwsze niepokojące przypadki nietypowego zapalenia oskrzeli i płuc u pacjentów, których łączył fakt przebywania w ostatnim czasie na terenie słynnego w prowincji Hubei rynku owoców morza. Nowy patogen, który finalnie uzyskał nazwę koronawirusa SARS-CoV-2, dość szybko został wyizolowany od chorych i poprawnie zidentyfikowany przez pracowników lokalnego szpitala za pomocą wypracowanego wcześniej mechanizmu szybkiego reagowania na wypadek „zapalenia płuc o nieznanej etiologii”. Taka procedura została ustanowiona niedługo po wybuchu epidemii SARS w 2003 roku. Tym razem jednak wirus okazał się być bardziej zakaźny, a tempo jego rozprzestrzeniania wyjątkowo szybkie. W dniu 30 stycznia 2020 roku Światowa Organizacja Zdrowia (World Health Organization ‒ WHO) oświadczyła, że choroba, która do tego momentu zyskała już oficjalną nazwę COVID-19, jest „stanem zagrożenia zdrowia publicznego o zasięgu międzynarodowym”. Gwałtownie rosła liczba zakażeń w wielu krajach świata, błyskawicznie lokalizując się na wszystkich kontynentach, co sprawiło, że w dniu 20 marca 2020 został ogłoszony przez WHO stan pandemii.

  Prace nad szczepionką i jej skutecznoscią


Nie było tajemnicą, iż szybkie powstrzymanie pandemii będzie możliwe nie tylko za sprawą skutecznego leczenia, ale przede wszystkim przez możliwie jak najszybsze wynalezienie i wprowadzenie skutecznych szczepień ochronnych. Badania nad szczepionką przeciwko chorobie COVID-19 rozpoczęły się właściwie natychmiast po opublikowaniu sekwencji genomu koronawirusa SARS-CoV-2, co miało miejsce dokładnie 11 stycznia 2020 roku. Na szczęście wiele firm farmaceutycznych i biotechnologicznych już wcześniej pracowało nad podobnymi szczepionkami, a przynajmniej możliwymi do zastosowania technologiami, dlatego pierwsze prototypy tak pożądanych produktów były gotowe do rozpoczęcia badań klinicznych na ludziach w rekordowym tempie – już pod koniec marca 2020 roku. Na tym etapie było jednak wiele niejasności, np. która technologia jest w tym przypadku najskuteczniejszą, aby w jak najkrótszym czasie zmaksymalizować szanse na opracowanie bezpiecznej i skutecznej szczepionki przeciw COVID-19. Niektóre koncerny farmaceutyczne, takie jak Pfizer, zdecydowały się na testowanie jednocześnie kilku wersji, szczególnie w przypadku technologii mRNA testowano kilka opracowanych wcześniej konstruktów. Klasyczne szczepionki, które znamy już od wielu dekad, wykorzystują białka do wywołania odpowiedzi immunologicznej, całe atenuowane patogeny lub jedynie ich elementy, w tym kwasy nukleinowe. Jednakże szczepionki oparte na technologii wykorzystującej mRNA nie zawierają żadnego gotowego antygenu, ale dokładny przepis, instrukcję na jego przygotowanie, zapisane w postaci niewielkiego i odpowiednio zabezpieczonego przed szybką degradacją mRNA. Antygenem zakodowanym w stworzonej wtedy pierwszej skutecznej szczepionce przeciwko chorobie COVID-19 jest białko S (ang. spike protein, czyli białko kolca) wirusa SARS-CoV-2.



Z perspektywy czasu nie mamy żadnych wątpliwości, iż opracowanie szczepionki przeciwko COVID-19, obok dystansu społecznego, noszenia maseczek i środków ochrony osobistej, miało kluczowe i nadrzędne znaczenie dla powstrzymania pandemii.

Opracowanie skutecznej szczepionki w tak krótkim czasie było też swego rodzaju przełomem. Szczepionka idealna powinna stymulować zarówno odpowiedź humoralną, czyli tę odpowiedź związaną z produkcją przeciwciał, jak również odpowiedź komórkową, czyli tę związaną z aktywacją i działalnością limfocytów T. Wydaje się, z perspektywy coraz większej liczby ukazujących się wyników badań, że wszystkie obecne dzisiaj na rynku szczepionki przeciwko chorobie COVID-19 spełniają te kryteria. Jednakże zarówno w przypadku tych szczepionek, jak również innych preparatów, które znamy i stosujemy od dawna jako szczepionki ochronne w przypadku innych chorób, okres utrzymywania się ochrony zapewnianej przez konkretną szczepionkę pozostaje nieznany, a obecnie opublikowane wyniki mogą się jeszcze zmienić – liczne badania są w progresie. Wiemy już, że dla większości z nas niezbędne są kolejne dawki szczepienia, a kwestią sporną pozostaje wciąż ewentualność corocznych szczepień, tak jak ma to miejsce w przypadku szczepienia przeciwko grypie. Wydaje się jednak, że wirus SARS-CoV-2 mutuje z nieco mniejszą intensywnością, co daje nadzieje na uzyskanie nieco dłużej odporności poszczepiennej.

  Odporność po infekcji a odporność poszczepienna: produkcja przeciwciał


Do najważniejszych mechanizmów odporności nieswoistej, która stanowi naszą ewolucyjnie starszą linię obrony przed nieznanymi patogenami, należą m.in.: wydzielanie cytokin prozapalnych przez aktywowane fagocyty, wydzielanie czynników chemotaktycznych, zwabiających limfocyty do miejsca obecności patogenów, fagocytoza i prezentacja antygenów przez makrofagi. Jednakże w przypadku odpowiedzi na COVID-19, zarówno poszczepiennej, jak i wytwarzanej w odpowiedzi na szczepienie ochronne, największe znaczenie mają mechanizmy odpowiedzi swoistej nabytej. Zarówno odpowiedź humoralna, jak i komórkowa jest już solidnie opisana w literaturze przedmiotu, choć bardzo wiele pozostaje pytań bez odpowiedzi.

I tak dla przykładu wiemy już, że istnieją osoby, które nie odpowiadają niemalże wcale na zastosowaną szczepionkę – nie wytwarzają przeciwciał albo przeciwciała te błyskawicznie zanikają. Nie wytwarzają się również komórki pamięci. U niektórych osób zaobserwowano z kolei hiperprodukcję przeciwciał już po pierwszej dawce, a w dodatku utrzymywały się one nawet wiele miesięcy po szczepieniu. Nie jest do dziś jasne, czy tak skrajne możliwe formy odpowiedzi układu odpornościowego są związane na przykład z posiadanymi przez te osoby wariantami pewnych genów związanych m.in. z produkcją przeciwciał bądź funkcjonowaniem układu immunologicznego per se. Być może odpowiedzi na wiele z tych pytań przyniosą najbliższe miesiące, bo wiele trwających globalnie badań naukowych powoli zbliża się ku końcowi.

Przeciwciała

Odpowiedź humoralna, na której skupimy się najbardziej w pozostałej części artykułu, jest warunkowana przez przeciwciała produkowane przez limfocyty B. Wiadomo już, że produkcja przeciwciał jest związana przede wszystkim z trzema regionami genomu człowieka, w których zlokalizowane są rodziny genów:

→ H na chromosomie 14 (ta rodzina genów koduje przede wszystkim łańcuch ciężki),
→ κ (kappa) na chromosomie 2 (tutaj kodowane są elementy łańcucha lekkiego),
→ λ (lambda) na chromosomie 22 (również elementy łańcucha lekkiego).

Ludzkie przeciwciała są zbudowane z łańcuchów ciężkich i lekkich, w których skład wchodzą część stała (ang. constant ‒ C) oraz zmienna (ang. variable ‒ V). Każdy z regionów zawiera wiele genów, których ekspresja podlega precyzyjnej regulacji – dla przykładu region genomu, w którym zlokalizowana jest rodzina genów kodujących elementy łańcucha ciężkiego, zawiera aż 65 poznanych genów dla segmentu V, 27 genów dla segmentu D (ang. diversity) oraz 6 genów dla segmentu stanowiącego łącznik (ang. joining ‒ J). Związane z produkcją przeciwciał regiony genomu ludzkiego charakteryzują się bardzo wysoką zmiennością, zarówno międzyosobniczą, jak i pomiędzy populacjami, przy czym mamy tu na myśli nie tylko zmienność wynikającą z pojedynczych mutacji punktowych, zmian pojedynczego nukleotydu, ale również znacznie większych CNVs (ang. copy numer variants). Dla jednego z genów należącego do jednej z tych rodzin opisano i sklasyfikowano już ponad 420 różnych alleli.

Tę wyjątkową i gigantyczną zmienność najlepiej ilustruje przykład regionu genomowego IGHV (należący do regionu rodziny genów H), który ma około 1 Mb długości: zaobserwowano, że pomiędzy dwiema statystycznymi osobami populacji europejskiej ten region może się różnić o ponad 100 Kb długości, a także średnio 2800 SNPs i/lub CVNs. Te trzy regiony genów związane z odpornością, zaraz obok regionów KIR (ang. killer cell receptor regions) i HLA (ang. human leukocyte antigens), cechują się najwyższą zaobserwowaną w ludzkim genomie heterozygotycznością. Bardzo długie powtórzenia trójek lub tych samych nukleotydów to również standard wszystkich wymienionych regionów genomu, przez co sekwencjonowanie regionów genomu człowieka związanych z odpornością obarczone jest zawsze dużym ryzykiem błędu. Wszelkiego rodzaju mutacje tych genów, a także typowe dla nich rearanżacje dają właściwie nieograniczone możliwości produkcji specyficznych przeciwciał. Według najostrożniejszych szacunków możliwe są setki tysięcy takich kombinacji, choć średnio przyjmuje się minimum 1015 możliwości. Na poziomie molekularnym proces ten uznawany jest za jeden z najmniej poznanych, co w dużej części wynika z niedoskonałości dostępnych metod badawczych. Niezmiennie analiza regionów genomu związanych z odpornością uważana jest za niezwykle trudną i pracochłonną. Nie ułatwia tego konieczność odróżnienia zmienności międzyosobniczej od ewentualnie występujących wariantów patogennych, co być może przestanie stanowić problem wraz ze wzrastającą liczbą projektów skupiających się na sekwencjonowaniu pełnych genomów przedstawicieli różnych populacji świata. Nie bez znaczenia pozostają także nowe metody sekwencjonowania, w szczególności sekwencjonowanie trzeciej generacji oraz stale rosnące możliwości analizy bioinformatycznej i tworzonych narzędzi dedykowanych do tego typu analiz.



Niezwykle interesującym odkryciem, nie tylko na poziomie molekularnym, było potwierdzenie przypuszczenia, że na pewne typy patogenów odpowiadamy w bardzo podobny sposób, do tego stopnia, iż wytwarzane przeciwciała mają identyczne sekwencje aminokwasowe.

Stanowi to niewątpliwe potwierdzenie sensowności wykonywania szczegółowych analiz na dużych kohortach, a także konieczności reanalizy już istniejących zbiorów danych. Dla przykładu: zaobserwowano, że związany z produkcją przeciwciał gen IGHV1-69 ulega ekspresji przede wszystkim w dojrzałych limfocytach B. Jednakże znacznie częściej posiada on allel F54 (kodujący fenyloalaninę w pozycji 54 łańcucha białkowego), jeśli są to limfocyty B związane z przewlekłą białaczką limfocytową (ang. chronic lymphocytic leukaemia ‒ CLL), natomiast allel L54 (kodujący w tym miejscu leucynę) jest obecny częściej, jeśli są to limfocyty B obecne w przypadku infekcji wirusa HIV. Ten drugi allel genu, L54, znacznie częściej występuje również w komórkach pamięci, podczas gdy allelu F54 nie zaobserwowano w tej grupie komórek. Wykazano również, że ten sam gen i jego różne allele odgrywają istotną rolę w przypadku produkcji przeciwciał oraz ich zdolności do neutralizacji wirusa MERS-CoV, co sugeruje możliwą rolę również w przypadku SARS-CoV-2.

Jakości produkowanych przeciwciał

Kolejny problem, o którym należy pamiętać, dotyczy jakości produkowanych przeciwciał. Znaczna część chorych po przebyciu infekcji COVID-19 posiada we krwi stosowne przeciwciała. Okazuje się jednak, że nie wszystkie one są tak samo skuteczne. Najbardziej pożądaną grupą są tzw. przeciwciała neutralizujące, mające zdolność oddziaływania bezpośrednio na cząstkę wirusa.

Jedno z ciekawszych badań w tym obszarze, przeprowadzone w Chinach pod koniec pandemii na 175 pacjentach, którzy przechorowali COVID-19, wykazało, że aż 30% badanych osób miało bardzo niski poziom przeciwciał neutralizujących. Dodatkowo osoba posiadająca przeciwciała przeciw SARS-CoV-2 i sama pozostając bez objawów infekcji, może nadal być nosicielem wirusa i transmitować go na inne osoby. Eksperci z amerykańskiego NIH informują w swoim doniesieniu o wykryciu przynajmniej 55 różnych przeciwciał produkowanych w badanej populacji chorych na COVID-19 w odpowiedzi na infekcję SARS-CoV-2. Interesującym faktem jest również odkrycie, iż większość przeciwciał tej grupy skierowana jest przeciwko epitopowi S2 wirusowego białka kolca, zawierającemu resztę aminokwasową K814. Te przeciwciała nie mają jednak charakteru neutralizującego.
Bibiliografia

  1. Sompayrac L: How the Immune System Works. Wiley Blackwell 2016.

  2. Abbas AK, Lichtman AH, Pillai S: Immunologia – funkcje i zaburzenia układu immunologicznego. Elsevier 2020.

  3. Wojciechowska-Koszko I, Dołęgowska B (red.): Immunologia – teoretyczny i praktyczny przewodnik. PUM, Szczecin 2020.

  4. Gołąb J, Jakóbisiak M, Lasek W, Stokłosa T (red.): Immunologia. PZWL, Warszawa 2017.

  5. Żeromski J, Madaliński K, Witkowski JM (red.): Diagnostyka immunologiczna w praktyce lekarskiej. Mediton, Łódź 2017.

  6. Dacon C, Peng L, Lin TH et al.: Rare, convergent antibodies targeting the stem helix broadly neutralize diverse betacoronaviruses. Cell Host & Microbe 2022: S1931-3128(22)00523-6.

  7. Weiss SR, Leibowitz JL: Coronavirus pathogenesis. Adv Virus Res 2011; 81: 85-164.

  8. Drosten C, Günther S, Preiser W: Identification of a novel coronavirus in patients with severe acute respiratory syndrome. N Engl J Med 2003; 348: 1967-1976.

  9. Cui J, Li F, Shi Z: Origin and evolution of pathogenic coronaviruses. Nat Rev Microbiol 2019; 7: 181-192.

  10. Zhu N, Zhang D, Wang W ET AL.: A novel coronavirus from patients with pneumonia in China, 2019. N Engl J Med 2020; 82: 727-733.

  11. https://www.who.int/news-room/detail/30-01-2020-statement-on-the-second-meeting-of-the-international-health-regulations-(2005)-emergency-committee-regarding-the-outbreak-of-novel-coronavirus-(2019-ncov) (dostęp: 01.04.2020).

  12. https://www.who.int/dg/speeches/detail/who-director-general-s-opening-remarks-at-the-media-briefing-on-covid-19---11-march-2020 (dostęp: 01.04.2020).

  13. Cheng ZJ, Shan J: 2019 Novel coronavirus: where we are and what we know. Infection 2020; 48: 155-163.

  14. https://szczepienia.pzh.gov.pl/wszystko-o-szczepieniach/opracowywane-szczepionki/.

  15. Mishra KP, Singh AK, Singh SB: Hyperinflammation and Immune Response Generation in COVID-19. Neuroimmunomodulation 2020: 1-7.

  16. Celardo I, Pace L, Cifaldi L et al.: The immune system view of the coronavirus SARS-CoV-2. Biol Direct 2020; 15(1): 30.

  17. Yu X, Yang R: Changes of peripheral lymphocyte subset in patients with SARS-CoV-2 infection during the whole course of disease. Expert Rev Respir Med 2020: 1-7.

  18. Demaret J, Lefevre G, Vuotto F et al.: Severe SARS-CoV-2 patients develop a higher specific T-cell response. Clin Transl Immunology 2020; 9(12): e1217.

  19. Sohrabi Y, Dos Santos JC, Dorenkamp M et al.: Trained immunity as a novel approach against COVID-19 with a focus on Bacillus Calmette-Guerin vaccine: mechanisms, challenges and perspectives. Clin Transl Immunology 2020; 9(12): e1228.

  20. Reynolds CJ, Swadling L, Gibbons JM et al.: Discordant neutralizing antibody and T cell responses in asymptomatic and mild SARS-CoV-2 infection. Sci Immunol 2020; 5(54).

  21. Choe PG, Kim KH, Kang CK et al.: Antibody Responses 8 Months after Asymptomatic or Mild SARS-CoV-2 Infection. Emerg Infect Dis 2020; 27(3).

  22. Amoroso A, Magistroni P, Vespasiano F et al.: HLA and AB0 Polymorphisms May Influence SARS-CoV-2 Infection and COVID-19 Severity. Transplantation 2021; 105(1): 193-200.

  23. Zilla ML, Keetch C, Mitchell G et al.: SARS-CoV-2 serologic immune response in exogenously immunosuppressed patients. J Appl Lab Med 2020.

  24. Simmonds P, Williams S, Harvala H: Understanding the outcomes of COVID-19 ‒ does the current model of an acute respiratory infection really fit? J Gen Virol 2020.

  25. Watson CT, Glanville J, Marasco WA: The Individual and Population Genetics of Antibody Immunity. Trends Immunol 2017; 38(7): 459-470.

  26. Feeney AJ: A defective Vkappa A2 allele in Navajos which may play a role in increased susceptibility to Haemophilus influenzae type b disease. J Clin Invest 1996; 97: 2277-2282.

  27. https://www.sciencedaily.com/releases/2019/01/190110112956.htm.

  28. Wang C: B-cell repertoire responses to varicella-zoster vaccination in human identical twins. Proc Natl Acad Sci U. S. A. 2015; 112: 500-505.

  29. Thomson CA: Germline V-genes sculpt the binding site of a family of antibodies neutralizing human cytomegalovirus. EMBO J 2008; 27: 2592-2602.

  30. Yeung YA: Germline-encoded neutralization of a Staphylococcus aureus virulence factor by the human antibody repertoire. Nat Commun 2016; 7: 13376.

  31. Pappas L: Rapid development of broadly influenza neutralizing antibodies through redundant mutations. Nature 2014; 516: 418-422.

  32. Ying T: Junctional and allele-specific residues are critical for MERS-CoV neutralization by an exceptionally potent germline-like antibody. Nat Commun 2015; 6: 8223.

  33. Hughes EC, Amat JAR, Haney J et al.: SARS-CoV-2 serosurveillance in a patient population reveals differences in virus exposure and antibody-mediated immunity according to host demography and healthcare setting. J Infect Dis 2020.

  34. Devarakonda CKV, Meredith E, Ghosh M, Shapiro LH: Coronavirus Receptors as Immune Modulators. J Immunol 2020.

  35. Wiktorowicz K, Kaszkowiak K: Budowa i funkcja ludzkich antygenów zgodności tkankowej. Część 1. Kodowanie i budowa. Forum Reumatologiczne 2018; 4(1): 37-44.

  36. Choo SY: The HLA system: genetics, immunology, clinical testing, and clinical implications. Yonsei Med J 2007; 48(1): 11-23.

  37. Wieczorek M, Abualrous ET, Sticht J et al.: Major Histocompatibility Complex (MHC) Class I and MHC Class II Proteins: Conformational Plasticity in Antigen Presentation. Front Immunol 2017; 8: 292.

  38. Tumer G, Simpson B, Roberts TK: Genetics, Human Major Histocompatibility Complex (MHC). 2022 Aug 8.

  39. Nowak J: The role of HLA disparity in hematopoietic stem cells transplantation; Hematologia 2010; 1(1): 49-58.

  40. Mosaferi E, Majidi J, Baradaran B: HLA-G expression pattern: reliable assessment for pregnancy outcome prediction. Adv Pharm Bull 2013; 3(2): 443-446.

  41. Shobeiri SS, Abediankenari S, Lashtoo-Aghaee B et al.: Evaluation of soluble human leukocyte antigen-G in peripheral blood of pregnant women with gestational diabetes mellitus. Caspian J Intern Med 2016; 7(3): 178-182.

  42. Sipak-Szmigiel O, Cybulski C, Ronin-Walknowska E, Lubuski J: Ryzyko wczesnej ciąży w zależności od alleli HLA-G. Roczniki Pomorskiej AM w Szczecinie 2008; 54: 60-64.

  43. Babiker A, Marvil C, Waggoner JJ et al.: The Importance and Challenges of Identifying SARS-CoV-2 Reinfections. J Clin Microbiol 2020.

  44. Post N, Eddy D, Huntley C et al.: Antibody response to SARS-CoV-2 infection in humans: A systematic review. PLoS One 2020; 15(12): e0244126.

  45. Chung JY, Thone MN, Kwon YJ: COVID-19 vaccines: The status and perspectives in delivery points of view. Adv Drug Deliv Rev 2020; 170: 1-25.

  46. Yang H, Lyu Y, Hou F: SARS-CoV-2 infection and the antiviral innate immune response. J Mol Cell Biol 2020.

  47. Karmakar D, Lahiri B, Ranjan P et al.: Road Map to Understanding SARS-CoV-2 Clinico-Immunopathology and COVID-19 Disease Severity. Pathogens 2020; 10(1).

  48. Morris KV: The Road Less Traveled: SARS-CoV-2 and Cell-Mediated Immunity. Mol Ther 2020; 28(12): 2521-2522.

  49. Wang X, Gui J: Cell-mediated immunity to SARS-CoV-2. Pediatr Investig 2020; 4(4): 281-291.

  50. Wei J, Zhao J, Han M et al.: SARS-CoV-2 infection in immunocompromised patients: humoral versus cell-mediated immunity. J Immunother Cancer 2020; 8(2).

  51. Hanrath AT, Payne BAI, Duncan CJA: Prior SARS-CoV-2 infection is associated with protection against symptomatic reinfection. J Infect 2020.

  52. Pisanic N, Randad PR, Kruczynski K et al.: COVID-19 Serology at Population Scale: SARS-CoV-2-Specific Antibody Responses in Saliva. J Clin Microbiol 2020; 59(1).

  53. Castro Dopico X, Ols S, Loré K, Karlsson Hedestam GB: Immunity to SARS-CoV-2 induced by infection or vaccination. J Intern Med 2021.

  54. Werbel WA, Boyarsky BJ, Ou MT et al.: Safety and Immunogenicity of a Third Dose of SARS-CoV-2 Vaccine in Solid Organ Transplant Recipients: A Case Series. Ann Intern Med 2021.

  55. Callaway E: COVID vaccine boosters: the most important questions. Nature 2021.

  56. Bergwerk M, Gonen T, Lustig Y et al.: Covid-19 Breakthrough Infections in Vaccinated Health Care Workers. N Engl J Med 2021.

  57. Deng W, Bao L, Liu J et al.: Primary exposure to SARS-CoV-2 protects against reinfection in rhesus macaques. Science 2020; 369: 818-823.

  58. Hamady A, Lee J, Loboda ZA: Waning antibody responses in COVID-19: what can we learn from the analysis of other coronaviruses. Infection 2021.

  59. Rank A, Tzortzini A, Kling E et al.: One Year after Mild COVID-19: The Majority of Patients Maintain Specific Immunity, But One in Four Still Suffer from Long-Term Symptoms. J Clin Med 2021; 10(15): 3305.

  60. Le Bert N, Tan AT, Kunasegaran K et al.: SARS-CoV-2-specific T cell immunity in cases of COVID-19 and SARS, and uninfected controls. Nature 2020; 584: 457-462.

  61. da Silva Antunes R, Pallikkuth S, Williams E et al.: Differential T-Cell Reactivity to Endemic Coronaviruses and SARS-CoV-2 in Community and Health Care Workers. J Infect Dis 2021; 224: 70-80.

  62. Hanan N, Doud RL, Park IW et al.: The Many Faces of Innate Immunity in SARS-CoV-2 Infection. Vaccines (Basel) 2021; 9: 596.

  63. Lee E, Oh JE: Humoral Immunity against SARS-CoV-2 and the Impact on COVID-19 Pathogenesis. Mol Cells 2021; 44: 392-400.

  64. DiPiazza AT, Graham BS, Ruckwardt TJ: T cell immunity to SARS-CoV-2 following natural infection and vaccination. Biochem Biophys Res Commun 2021; 538: 211-217.

  65. Wu F, Liu M, Wang A et al.: Evaluating the Association of Clinical Characteristics With Neutralizing Antibody Levels in Patients Who Have Recovered From Mild COVID-19 in Shanghai, China. JAMA Intern Med 2020; 180: 1356-1362.

  66. Yu X, Tsibane T, McGraw PA et al.: Neutralizing antibodies derived from the B cells of 1918 influenza pandemic survivors. Nature 2008; 455: 532-536.

  67. Rodda LB, Netland J, Shehata L et al.: Functional SARS-CoV-2-Specific Immune Memory Persists after Mild COVID-19. Cell 2021; 184: 169-183.e17.

  68. Sekine T, Perez-Potti A, Rivera-Ballesteros O et al.: Robust T Cell Immunity in Convalescent Individuals with Asymptomatic or Mild COVID-19. Cell 2020; 183: 158-168.e14.

  69. Braun J, Loyal L, Frentsch M et al.: SARS-CoV-2-reactive T cells in healthy donors and patients with COVID-19. Nature 2020; 587: 270-274.

  70. Schmidt ME, Varga SM: The CD8 T Cell Response to Respiratory Virus Infections. Front Immunol 2018; 9: 678.

  71. Flaxman A, Marchevsky N, Jenkin D et al.: Tolerability and Immunogenicity After a Late Second Dose or a Third Dose of ChAdOx1 nCoV-19 (AZD1222). Preprints with The Lancet 2021. https://papers.ssrn.com/sol3/papers.cfm?abstract_id=3873839.

  72. Morales GB, Munoz MA: Immune amnesia induced by measles and its effects on concurrent epidemics. J R Soc Interface 18, 20210153.

  73. Zhang JY, Roberts H, Flores DSC et al.: Using de novo assembly to identify structural variation of eight complex immune system gene regions. PLOS Computational Biology 2021; 17(8): e1009254.

  74. Goldfeder RL, Priest JR, Zook JM et al.: Medical implications of technical accuracy in genome sequencing. Genome Med 2016; 8: 24.

  75. Reis ALM, Deveson IW, Madala BS et al.: Using synthetic chromosome controls to evaluate the sequencing of difficult regions within the human genome. Genome Biol 2022; 23: 19.

  76. Hurley CK, Kempenich J, Wadsworth K et al.: Common, intermediate and well-documented HLA alleles in world populations: CIWD version 3.0.0. HLA 2020; 95(6): 516-531.

  77. Klasberg S, Surendranath V, Lange V, Schöfl G: Bioinformatics Strategies, Challenges, and Opportunities for Next Generation Sequencing-Based HLA Genotyping. Transfus Med Hemother 2019; 46: 312-325.

  78. Mosbruger TL, Dinou A, Duke JL et al.: Utilizing nanopore sequencing technology for the rapid and comprehensive characterization of eleven HLA loci; addressing the need for deceased donor expedited HLA typing. Hum Immunol 2020; 81(8): 413-422.

  79. Hu T, Chitnis N, Monos D, Dinh A: Next-generation sequencing technologies: An overview. Hum Immunol 2021; 82(11): 801-811.

  80. Pröll J, Danzer M, Stabentheiner S et al.: Sequence capture and next generation resequencing of the MHC region highlights potential transplantation determinants in HLA identical haematopoietic stem cell transplantation. DNA Res 2011; 18(4): 201-210.

  81. Lind C, Ferriola D, Mackiewicz K et al.: Next-generation sequencing: the solution for high-resolution, unambiguous human leukocyte antigen typing. Hum Immunol 2010; 71(10): 1033-1042.

  82. McCombie WR, McPherson JD, Mardis ER: Next-Generation Sequencing Technologies. Cold Spring Harb Perspect Med 2019; 9(11): a036798.